ATAC-Seq剖析教程系列
ATAC-Seq剖析教程:ATAC-seq的布景介绍以及与ChIP-Seq的异同
ATAC-Seq剖析教程:原始数据的质控、比对和过滤
ATAC-Seq剖析教程:用MACS2软件call peaks
ATAC-Seq剖析教程:对ATAC-Seq/ChIP-seq的质量评估(一)phantompeakqualtools
ATAC-Seq剖析教程:对ATAC-Seq/ChIP-seq的质量评估(二)ChIPQC
ATAC-Seq剖析教程:重复样本的处理-IDR
ATAC-Seq剖析教程:用ChIPseeker对peaks进行注释和可视化
ATAC-Seq剖析教程:用网页版东西做功用剖析和motif剖析
ATAC-Seq剖析教程:差异peaks剖析——DiffBind
ATAC-Seq剖析教程:ATAC-Seq、ChIP-Seq、RNA-Seq整合剖析
上一过程用IDR对重复样本peaks的一致性进行了评估,同时得到了merge后的一致性的peaks——sample-idr
,接下来就是对peaks的注释。这篇主要介绍用Y叔的R包ChIPseeker对peaks的方位(如peaks方位落在启动子、UTR、内含子等)以及peaks接近基因的注释。
ChIPseeker尽管最初是为了ChIP-seq注释而写的一个R包,但它不只局限于ChIP-seq,也可用于ATAC-Seq等其他富集peaks注释,也可用于lincRNA注释、DNA
breakpoints的断点方位注释等一切genomic coordination的注释,另外提供了丰厚的可视化功用。
运用ChIPseeker需求准备两个文件:一个就是要注释的peaks的文件,需满意BED格式。另一个就是注释参阅文件,即需求一个包括注释信息的TxDb目标。Bioconductor提供了30个TxDb包,假如其中有研讨的物种就能够直接下载装置此物种的TxDb信息。假如研讨的物种没有已知的TxDb,能够运用GenomicFeatures包的函数(makeTxDbFromUCSC,makeTxDbFromBiomart)制造TxDb目标:
makeTxDbFromUCSC: 经过UCSC在线制造TxDb
makeTxDbFromBiomart: 经过ensembl在线制造TxDb
makeTxDbFromGRanges:经过GRanges目标制造TxDb
makeTxDbFromGFF:经过解析GFF文件制造TxDb
制造TxDb办法示例:
library(GenomicFeatures)
hg19.refseq.db <- makeTxDbFromUCSC(genome=\"hg19\", table=\"refGene\")
download.file(\"ftp://ftp.ebi.ac.uk/pub/databases/pombase/pombe/Chromosome_Dumps/gff3/schizosaccharomyces_pombe.chr.gff3\", \"schizosaccharomyces_pombe.chr.gff3\")require(GenomicFeatures)
spombe <- makeTxDbFromGFF(\"schizosaccharomyces_pombe.chr.gff3\")
具体过程如下:
从Bioconductor直接下载,或从github装置最新版本
source (\"https://bioconductor.org/biocLite.R\")
biocLite(\"ChIPseeker\")
# 下载人的基因和lincRNA的TxDb目标
biocLite(\"org.Hs.eg.db\")
biocLite(\"TxDb.Hsapiens.UCSC.hg19.knownGene\")
biocLite(\"TxDb.Hsapiens.UCSC.hg19.lincRNAsTranscripts\")
biocLite(\"clusterProfiler\")
#载入各种包
library(\"ChIPseeker\")
library(clusterProfiler)
library(\"org.Hs.eg.db\")
library(TxDb.Hsapiens.UCSC.hg19.knownGene)
txdb <- TxDb.Hsapiens.UCSC.hg19.knownGene
library(\"TxDb.Hsapiens.UCSC.hg19.lincRNAsTranscripts\")
lincRNA_txdb=TxDb.Hsapiens.UCSC.hg19.lincRNAsTranscripts
函数readPeakFile
读入peaks文件
nanog <- readPeakFile(\"./idr_out.bed/nanog_idr-bed\")
pou5f1 <- readPeakFile(\"./idr_out.bed/pou5f1_idr-bed\")
peaks的注释是用的annotatePeak
函数,能够单独对每个peaks文件进行注释,也能够将多个peaks制造成一个list,进行比较剖析和可视化。
# 制造多个样本比较的list
peaks <- list(Nanog=nanog,Pou5f1=pou5f1)
# promotor区间范围能够自己设定
promoter <- getPromoters(TxDb=txdb, upstream=3000, downstream=3000)
tagMatrixList <- lapply(peaks, getTagMatrix, windows=promoter)
#annotatePeak传入annoDb参数,可进行基因ID转换(Entrez,ENSEMBL,SYMBOL,GENENAME)
peakAnnoList <- lapply(peaks, annotatePeak, TxDb=txdb,tssRegion=c(-3000, 3000), verbose=FALSE,addFlankGeneInfo=TRUE, flankDistance=5000,annoDb=\"org.Hs.eg.db\")
annotatePeak传入annoDb参数,即可进行基因ID转换,将Entrez ID转化为ENSEMBL,SYMBOL,GENENAME,peakAnnoList的成果如下:
seqnames start end width strand annotation geneChr geneStart geneEnd geneLength geneStrand geneId transcriptId distanceToTSS ENSEMBL SYMBOL GENENAME flank_txIds flank_geneIds flank_gene_distances
5 chr3 196625522 196625873 352 * Intron (uc003fwz.4/205564, intron 2 of 9) 3 196594727 196661584 66858 1 205564 uc011bty.2 30795 ENSG00000119231 SENP5 SUMO specific peptidase 5 uc003fwz.4;uc011bty.2 205564;205564 0;0
提供了多种可视化办法,如plotAnnoBar(),vennpie(),plotAnnoPie(),plotDistToTSS()等,下面展现了两个样本在基因组特征区域的分布以及转录因子在TSS区域的结合。
plotAnnoBar(peakAnnoList)
plotDistToTSS(peakAnnoList,title=\"Distribution of transcription factor-binding loci n relative to TSS\")
提取peakAnnolist中的基因,结合clusterProfiler包对peaks内的附近基因进行富集注释。
# Create a list with genes from each sample
gene = lapply(peakAnnoList, function(i) as.data.frame(i)$geneId)
# Run GO enrichment analysis
ego <- enrichGO(gene = entrez,
keytype = \"ENTREZID\",
OrgDb = org.Hs.eg.db,
ont = \"BP\",
pAdjustMethod = \"BH\",
qvalueCutoff = 0.05,
readable = TRUE)
# Dotplot visualization
dotplot(ego, showCategory=50)
# Multiple samples KEGG analysis
compKEGG <- compareCluster(geneCluster = gene,
fun = \"enrichKEGG\",
organism = \"human\",
pvalueCutoff = 0.05,
pAdjustMethod = \"BH\")
dotplot(compKEGG, showCategory = 20, title = \"KEGG Pathway Enrichment Analysis\")
# Output peakAnnolist file
save(peakAnnoList,file=\"peakAnnolist.rda\")
write.table(as.data.frame(peakAnnoList$Nanog),file=\"Nanog.PeakAnno\",sep=\'t\',quote = F)
# Output results from GO analysis to a table
cluster_summary <- data.frame(ego)
write.csv(cluster_summary, \"results/clusterProfiler_Nanog.csv\")